食品中单核细胞增生李斯特氏菌计数方法:平板计数法与MPN法解析

2026-07-07 16:12:39
逗点生物
简介

食品中单核细胞增生李斯特氏菌计数方法:平板计数法与MPN法解析

一、单核细胞增生李斯特氏菌定量检测概述

单核细胞增生李斯特氏菌(Listeria monocytogenes)是食品安全领域重点关注的食源性致病菌之一。除定性检测外,对于部分食品样品,还需要进一步了解其污染水平,即检测样品中单增李斯特菌的数量。

根据食品中菌量水平及背景微生物情况,单增李斯特菌定量检测主要包括:

  • 第二法:单核细胞增生李斯特氏菌平板计数法

  • 第三法:单核细胞增生李斯特氏菌MPN(最大可能数)计数法

其中:

  • 平板计数法适用于单增李斯特菌数量较高、背景干扰较少的样品;

  • MPN法适用于菌量较低、杂菌较多或难以直接计数的食品样品。

两种方法均需要结合选择性增菌、显色培养和菌落确认,以保证检测结果的准确性。


二、单增李斯特菌平板计数法

1. 样品制备与梯度稀释

检测时采用无菌操作称取样品:

  • 固体样品:25 g;

  • 液体样品:25 mL。

加入225 mL缓冲蛋白胨水(BPW)或无选择性LB肉汤,经均质处理制备:

1:10样品匀液。

随后进行10倍系列稀释,制备不同浓度的样品液,以便选择合适的计数范围。

需要注意:

单增李斯特菌属于革兰阳性菌,对环境适应能力较强,但在食品样品中通常数量较低,因此稀释度选择需要结合样品污染情况。


三、选择性显色培养与菌落计数

1. 平板接种

根据样品污染程度选择2~3个连续稀释度,每个稀释度取1 mL样品液,采用涂布法接种于:

  • 李斯特菌显色培养基;

  • ALOA琼脂。

通常采用:

0.3 mL + 0.3 mL + 0.4 mL

方式分别涂布于3个平板,以提高计数准确性。

培养条件:

  • 温度:36 ℃±1 ℃;

  • 时间:24~48 h。


2. ALOA培养基上的典型菌落

ALOA培养基是目前常用的李斯特菌显色培养基之一,其鉴别原理主要基于:

  1. β-葡萄糖苷酶活性;

  2. 磷脂酶活性。

单增李斯特菌典型表现:

  • 蓝绿色菌落;

  • 周围具有不透明晕圈。

需要注意:

ALOA上的典型菌落并不能完全等同于单增李斯特菌,因为部分其他李斯特菌也可能表现类似特征,因此必须进行后续确认。


四、典型菌落确认与计数原则

在计数时,应选择:

  • 同一稀释度3个平板菌落总数15~150 CFU;

  • 具有典型单增李斯特菌形态的菌落。

随后随机挑取:

  • 5个典型菌落;

  • 若少于5个,则全部进行鉴定。

确认方法包括:

  • 革兰染色;

  • 动力试验;

  • 过氧化氢酶试验;

  • 糖发酵试验;

  • 溶血试验;

  • 生化鉴定系统或质谱鉴定。

最终根据:

典型菌落比例 × 确证阳性比例 × 稀释倍数

计算样品中的单增李斯特菌数量。

检测结果以:

CFU/g 或 CFU/mL

表示。


五、单增李斯特菌MPN计数法

1. MPN方法原理

MPN(Most Probable Number,最大可能数)是一种基于统计学估算微生物数量的方法。

其基本原理:

通过不同稀释度多管培养,根据阳性管数量,通过MPN检索表计算样品中目标菌的最可能数量。

该方法特别适用于:

  • 菌量较低样品;

  • 食品基质复杂样品;

  • 直接平板计数困难的样品。


六、MPN检测流程

1. 初级增菌

样品按照平板计数方法制备10倍系列稀释液。

选择3个连续稀释度:

分别接种于LB1增菌液。

每个稀释度:

  • 3管;

  • 每管接种1 mL。

培养条件:

30 ℃±1 ℃培养24 h。


2. 二级增菌

每管LB1培养液取:

0.1 mL

转入:

10 mL LB2增菌液。

继续培养:

30 ℃±1 ℃,24 h左右。


3. 分离培养

从每个增菌管中取培养液接种:

  • 李斯特菌显色培养基;

  • ALOA平板。

培养:

36 ℃±1 ℃,24~48 h。

观察典型菌落,并进行确认鉴定。


七、MPN结果判定

根据每个稀释度中:

  • 阳性管数量;

  • 确认阳性的培养管数量;

查阅MPN检索表,计算:

每g(mL)样品中单核细胞增生李斯特氏菌最可能数量。

结果报告:

MPN/g(mL)

例如:

  • 10 MPN/g;

  • <1 MPN/g。


八、检测培养基体系及作用

1. 缓冲蛋白胨水(BPW)

主要作用:

  • 提供温和复苏环境;

  • 保护受损细胞;

  • 用于样品初始稀释。

主要成分:

成分 用量(g/L) 作用
蛋白胨 10.0 提供氮源和营养
氯化钠 5.0 保持渗透压
磷酸盐 10.5左右 缓冲pH

2. 李氏增菌肉汤(LB1/LB2)

主要用于选择性富集单增李斯特菌。

主要特点:

  • 高盐环境抑制部分杂菌;

  • 七叶苷用于李斯特菌代谢检测;

  • 吖啶黄、萘啶酮酸抑制伴随菌。


3. ALOA培养基

主要用于:

  • 李斯特菌分离;

  • 单增李斯特菌初步鉴别。

关键成分:

成分 作用
X-β-D-葡萄糖苷 检测β-葡萄糖苷酶
磷脂酰肌醇 增强磷脂酶反应
氯化锂 抑制部分杂菌
抗生素组合 提高选择性

4. PALCAM培养基

主要特点:

  • 七叶苷阳性产生黑色沉淀;

  • 甘露醇和指示剂辅助鉴别;

  • 适合食品中李斯特菌分离。


九、检测质量控制要求

单增李斯特菌计数方法对培养基性能要求较高,需要使用标准菌株进行质量控制。

常用菌株包括:

菌株 作用
Listeria monocytogenes ATCC19111 目标菌生长控制
Listeria innocua ATCC33090 非目标菌鉴别
Listeria ivanovii ATCC19119 溶血特征控制
Listeria seeligeri ATCC35967 溶血鉴别

质量评价重点:

  • 增菌液促进目标菌恢复;

  • 选择培养基具有抑制性;

  • 显色反应稳定;

  • 典型菌落特征符合要求。


十、总结

食品中单核细胞增生李斯特氏菌定量检测主要采用平板计数法和MPN法。

其中:

  • 平板计数法具有操作简单、结果直观的特点,适用于菌量较高样品;

  • MPN法通过统计学估算菌量,更适用于低污染或复杂食品基质。

无论采用何种方法,均需要结合选择性培养、显色培养和菌落确认,以避免由于非目标李斯特菌或背景菌导致的误判。

随着食品安全检测技术的发展,显色培养基、自动化鉴定系统、MALDI-TOF质谱和PCR技术逐渐应用于单增李斯特菌检测,使检测过程更加快速、准确和标准化。逗点生物提供李斯特菌检测相关增菌培养基、选择性分离培养基及显色培养基产品,为食品微生物实验室质量控制和风险监测提供可靠支持。