月桂基硫酸盐胰蛋白胨-MUG（LST-MUG）：大肠埃希氏菌与 O157:H7/NM 鉴别试验培养基

产品基本信息

配方组成、用量、作用及用途

检验原理

LST-MUG 的鉴别原理主要来自 乳糖发酵产气 和 MUG 荧光反应。

大肠菌群通常能够发酵乳糖并产生气体，因此培养基常分装于带倒置小导管的试管中。培养后如肉汤浑浊并且小导管中出现气体，提示存在乳糖发酵产气菌。月桂基硫酸钠则对部分非目标菌具有抑制作用，有助于提高大肠菌群检测的选择性。

MUG 的全称为 4-甲基伞形酮-β-D-葡萄糖醛酸苷。多数普通大肠埃希氏菌具有 β-葡萄糖醛酸苷酶，可水解 MUG 的 β-葡萄糖醛酸苷键，释放 4-甲基伞形酮。该产物在 366 nm 紫外灯下可产生蓝白色荧光，因此荧光阳性通常支持大肠埃希氏菌存在。

但典型大肠埃希氏菌 O157:H7 通常不具有 β-葡萄糖醛酸苷酶活性，因此多表现为 MUG 阴性、无荧光。也正因如此，LST-MUG 可用于辅助区分普通大肠埃希氏菌和 O157:H7/NM 等特殊菌株。需要强调的是，少数非大肠埃希氏菌也可能出现 MUG 阳性，少数大肠埃希氏菌也可能表现异常，因此荧光结果必须结合后续分离培养和确证试验综合判断。

使用方法

称取本品 35.7 g，加入蒸馏水或去离子水 1 L，搅拌加热煮沸至完全溶解，分装于带有倒置小导管的试管中，于 121℃高压灭菌 15 min，冷却后备用。

分装时应确保倒置小导管内无残留气泡，否则会影响产气判读。灭菌后培养基应澄清或基本澄清，无污染、异常沉淀或明显颜色异常。使用前应检查小导管状态，若小导管内已有气泡且无法排除，不宜用于正式试验。

典型结果判读

经 36℃培养 24 h 后，可从生长、产气和荧光三个方面观察结果。

对于 O157:H7/NM 的鉴别，应重点关注“产气但无荧光”的可疑结果，并进一步转接至 CT-SMAC、改良山梨醇麦康凯琼脂或其他适用选择性分离培养基进行分离鉴定。仅凭无荧光结果不能判定为 O157:H7/NM 阳性。

质量控制

下列质控菌株接种待测试培养基后，于 36℃培养 24 h，观察 MUG 荧光反应。

大肠埃希氏菌 ATCC 25922 应表现为 MUG 阳性，说明培养基中 MUG 底物和酶反应体系正常。大肠埃希氏菌 O157:H7 CMCC（B）44939 应表现为 MUG 阴性，可用于验证该培养基对 O157:H7 典型酶反应特征的鉴别能力。

若 ATCC 25922 无荧光，应检查培养基配制浓度、灭菌条件、MUG 稳定性、紫外灯波长、观察环境、培养时间和菌株活性。若 O157:H7 出现明显荧光，则应排查菌株真实性、交叉污染、培养基批次或判读条件是否存在问题。

使用注意事项

LST-MUG 属于鉴别性液体培养基，不能单独作为致病性大肠杆菌或 O157:H7/NM 的最终确认依据。荧光阳性常提示 β-葡萄糖醛酸苷酶阳性大肠埃希氏菌，荧光阴性则可提示 O157:H7/NM 等特殊菌株的可能性，但最终结果仍需结合选择性分离培养、生化鉴定、血清学试验或分子检测。

观察荧光时应使用 366 nm 紫外灯，并尽量在较暗环境下判读。培养基本身、样品基质或容器材料有时可能产生背景荧光，因此应同时设置阳性和阴性对照。操作紫外灯时应避免直视光源，做好眼部和皮肤防护。

干粉培养基使用后应立即密封，置于避光、干燥处保存，避免吸潮、结块或 MUG 底物降解。配制后的培养基应按实验室验证条件保存，并在规定有效期内使用。若出现污染、明显沉淀、颜色异常或小导管异常，不宜用于正式检测。

总体而言，月桂基硫酸盐胰蛋白胨-MUG（LST-MUG）通过乳糖发酵产气、月桂基硫酸钠选择性抑菌和 MUG 荧光反应相结合，可用于大肠埃希氏菌 β-葡萄糖醛酸苷酶活性的鉴别性试验，并可辅助筛选 O157:H7/NM 等 MUG 阴性大肠埃希氏菌，是相关微生物检测流程中常用的鉴别培养基之一。