YPDA培养基（含葡萄糖）：添加硫酸腺嘌呤的酵母完全液体培养基

产品信息

配方组成与作用

YPDA与YPD的区别

YPD 是酵母培养中最常用的完全培养基之一，主要由蛋白胨、酵母粉和葡萄糖组成。YPDA 则是在 YPD 基础上额外补充腺嘌呤成分，更适合用于需要腺嘌呤补充的酵母培养场景。对于普通酵母菌株，YPD 已能满足多数常规培养需求；对于某些带有 ade1、ade2 等突变背景的酿酒酵母，YPDA 可提供更充足的腺嘌呤环境，减少因腺嘌呤限制导致的红色或粉红色表型干扰。

YPDA 培养基不含琼脂，配制后为液体培养基，适用于摇瓶培养、菌液扩增、种子液制备和后续实验前的菌体制备。如果需要制备平板，应选择含琼脂的 YPDA 琼脂培养基，或在相应配方中加入合适比例的琼脂。

YPDA 也不是选择性培养基，不含抗生素、诱导剂、营养缺陷筛选成分或甲醇诱导体系，因此不能直接替代 SD、MD、MM、BMGY、BMMY 等选择性或诱导型培养基。用于毕赤酵母表达实验时，YPDA 可用于菌株复苏和预培养，但后续诱导表达应按照实验方案转入相应表达培养基。

使用方法

称取 YPDA培养基干粉 50.0 g，加入约 900 mL 蒸馏水或去离子水中，搅拌并加热至完全溶解，再定容至 1 L。121℃高压灭菌 15 min。灭菌结束后，将培养基冷却至约 30℃，即可用于酵母接种培养。

若需加入抗生素、筛选试剂或其他热敏性添加剂，应待培养基灭菌后冷却至适宜温度再无菌加入，并充分混匀后使用。用于酵母摇瓶培养时，应注意装液量和通气条件，三角瓶不宜装得过满，否则可能影响酵母有氧生长和菌体状态。

用于酵母液体培养时，可挑取新鲜单菌落接种于 YPDA 液体培养基中，通常 28～30℃振荡培养，培养时间根据菌株类型、生长速度、接种量和后续实验目的确定。酿酒酵母通常生长较快，毕赤酵母部分菌株的生长速度、菌体量和培养时间可能不同，应按菌株说明或实验方案调整培养条件。

高压灭菌与葡萄糖处理建议

YPDA培养基中同时含有葡萄糖和含氮有机成分，高压灭菌过程中可能发生一定程度的美拉德反应或糖类热降解，使培养基颜色加深。对于普通酿酒酵母常规培养，轻微颜色加深通常不影响菌体生长；对于酵母杂交实验等日常操作，直接高压灭菌具有操作简便、污染风险低的优势。

但对于毕赤酵母表达、碳源敏感实验或对培养基背景要求较高的实验，不建议简单忽略葡萄糖高压灭菌带来的影响。更稳妥的做法是将蛋白胨、酵母粉和硫酸腺嘌呤等基础成分先高压灭菌，葡萄糖配制成无菌储备液后过滤除菌，在培养基冷却后无菌加入。该方式可减少葡萄糖热降解和美拉德反应，降低培养基颜色加深及成分变化的风险。

质量控制与使用观察

YPDA培养基应支持酵母菌良好生长，培养后液体培养物通常出现明显浑浊，底部可见酵母沉淀或菌体聚集，摇匀后呈均一浑浊状态。实际生长表现会受到菌株、培养温度、培养时间、接种量、通气条件和培养基状态影响。若出现异常颜色、异味、污染、生长明显变慢或沉淀异常，应结合培养基批次、灭菌条件和储存状态进行排查。

储存条件与注意事项

本品应室温密封、干燥保存，避免受潮。开封后应及时旋紧瓶盖，并尽量减少长时间暴露在空气中的时间。若粉剂培养基出现严重吸水、结块、变色或异味，应停止使用，以免影响配制准确性和培养结果。

本产品仅限专业实验室科研使用，不得用于临床诊断或治疗，不得作为食品、药品或食品加工原料使用。操作时应穿实验服并佩戴一次性手套，实验结束后的带菌培养物、吸头、离心管、培养瓶等污染物应按实验室生物安全要求处理，通常可于 121℃高压灭菌 30 min 后再进行废弃。

小结

YPDA培养基（含葡萄糖）是一种添加硫酸腺嘌呤的酵母完全液体培养基，由 20.0 g/L 蛋白胨、10.0 g/L 酵母粉、20.0 g/L 葡萄糖和 30 mg/L 硫酸腺嘌呤组成，配制用量为 50.0 g/L。该培养基营养丰富，适用于酿酒酵母、毕赤酵母等常见酵母的菌株活化、液体扩增、种子液制备、杂交实验前后培养和常规传代。与 YPD 相比，YPDA 额外补充腺嘌呤，更适合需要腺嘌呤补充或希望减轻 ade 突变株红色表型的酵母培养体系。