离子交换、活性炭、紫外氧化、超滤和终端过滤等模块。超纯水的重要指标之一是电阻率。理论上，25 8451 时高纯水的电阻率约为18.2 m 937 183 cm，这接近实验室超纯水的最高水平。原文中8220 18.25 m 937 183 cm8221 不宜作为标准值，更常用表述为18.2 m 937 183 cm。电阻率单位应写作m 937 183 cm，

释度两个平行平皿，并非必须设置三个以上。科研试验为提高统计可靠性，可根据需要增加平行数。可计数菌落范围原文建议每个直径9 cm平皿计数50 ～500 cfu ，这一范围过宽。菌落过多时容易相互融合、争夺营养或产生抑制作用，从而低估实际数量；菌落过少时随机误差较

品和环境表面消毒效果监测物品和环境表面监测是消毒剂使用验证中最常用的方法。采样通常在消毒后规定时间内进行。被采表面不足100 cm178 时取全部表面；达到或超过100 cm178 时，可用10 cm215 10 cm标准规格板采样100 cm178 。不规则表面可用拭子直接擦拭，并记录估算面积。项

，代表离心力是地球重力的多少倍，是衡量离心效果的唯一标准，远比转速rpm 更可靠。关键换算公式（实验室通用）rcf g 1.118 215 10 8722 5 215 r cm215 rpm2 r ：离心转子有效半径（转轴到样品底部距离，单位cm）rpm ：每分钟转速（转/ 分钟）2 个重要实验结论        1. 离心力和转速

生物计数中最常见单位的真正含义在药品、医疗器械、化妆品、食品和培养基质控中，微生物检验报告里常见8220 cfu/g 8221 8220 cfu/ml 8221 8220 cfu/ 皿8221 8220 cfu/100 cm178 8221 等单位。很多人会把cfu 直接理解为8220 菌数8221 或8220 细胞数8221 ，这并不准确。cfu 的全称是colony-forming unit ，即菌落形成单位，表示在规定培养基、

稀释液制成一定浓度菌悬液，再经十倍系列稀释获得目标接种水平。原文中8220 蛋白质缓冲液8221 应更正为8220 蛋白胨缓冲液8221 ；平板规格8220 90 cm8221 也应更正为常用的8220 90 mm 8221 。三、菌种状态比稀释倍数更重要同一菌株、同一培养基、同一培养时间，不同人员制备出的菌悬液浓度

释、涂布、倾注或膜过滤检测。能否稀释取决于检测方法和结果表达方式，而不是表面采样本身。定量表面采样应明确取样面积，例如25 cm178 、50 cm178 、100 cm178 或规定设备部位。取样时可使用无菌取样框。拭子应先用适宜采样液湿润，在规定面积内纵向、横向和斜向充分擦

准要求处理。平板表面过湿、培养基未充分凝固、样品中运动性强的菌较多、冷凝水滴落等，均可能导致蔓延。十、菌落过多时能否选1 cm178 估算旧资料中提到可在最高稀释度平板上任意选取2 个1 cm178 面积估算总菌落数。这种方法在历史资料中可见，但不宜作为现代标准

采样液中洗脱，再进行稀释、涂布或倾注培养。表面接种应明确取样面积、采样液体积、洗脱方式和结果表达单位。例如结果可表示为cfu/25 cm178 、cfu/100 cm178 、cfu/ 件或检出/ 未检出。若表面刚经过消毒，采样液中应加入合适中和剂，避免残留消毒剂造成假阴性。十、注射接种和活

方式、洗脱液体积和结果表达单位。定性检测时，可根据目标污染源扩大擦拭范围；定量检测时，必须使用无菌规格板限定面积，例如25 cm178 、100 cm178 或企业内控规定面积。拭子法操作时，应先用无菌稀释液或含中和剂采样液湿润拭子，在规定区域内横向、纵向和斜向擦拭

用于平整、干燥、可直接接触的表面，常用于洁净区或食品接触面的清洁效果验证。方法适用场景结果表达拭子法小面积、不规则表面cfu/25 cm178 、cfu/100 cm178 等海绵拭子法大面积、环境病原监控检出/ 未检出或cfu/ 面积接触碟法平整表面、清洁验证cfu/ 皿或换算面积冲洗法容器、管件

样液。对刚消毒过的表面取样时，采样液中应含有合适中和剂，避免消毒剂残留造成假阴性。取样时，可使用无菌规格板限定面积，如10 cm215 10 cm。擦拭时应横向、纵向和斜向覆盖整个区域，并在擦拭过程中转动拭子头，使其充分接触表面。采样后立即将拭子放回无菌管或

留造成后续污染。拭子法适用于不规则表面、缝隙、角落、设备按钮和难以接触的区域。定量取样时应使用无菌规格板限定面积，例如10 cm215 10 cm。用经无菌稀释液或中和液湿润的拭子，按横向、纵向和斜向擦拭规定区域，并在擦拭过程中转动拭子头。采样后将拭子放入已

法和涂抹法。规则平整表面可用接触碟，粗糙、不规则、缝隙或大面积表面更适合拭子或海绵拭子。定量监测时应规定取样面积，例如25 cm178 、50 cm178 或100 cm178 ，并按cfu/cm 178 、cfu/25 cm178 或cfu/ 样点报告。人员手部可按每只手、每副手套或规定部位报告。拭子擦拭时应使用无菌模板

在待测表面，使表面微生物转移至培养基上，经培养后计数菌落。结果通常以cfu/ 碟表示。接触碟常用直径约55 mm 的培养皿，取样面积约25 cm178 。原文中8220 直径55 cm8221 为明显错误，应修正为55 mm 。接触碟适用于平整、干燥、规则的表面，如实验台面、洁净工作台、设备外表面

盖具有代表性的工作区域。通常要求：工作区高度约为离地0.8 ～1.5 m ；采样位置应高于实际工作面；送风区域采样点通常距离送风口约30 cm；关键设备、关键操作区域可增加采样点。a 级区域采样面积通常按照单向流送风口面积计算。采样点数量采样点数量根据洁净区域面

有规定琼脂培养基的接触碟直接接触被检测表面，使表面微生物转移至培养基中，经培养后进行菌落计数。通常每个接触碟取样面积约25 cm178 ，结果以cfu/ 碟表示。擦拭法擦拭法适用于不规则表面或难以直接接触的区域，例如设备缝隙、管路外壁等。检测时，采用无菌拭子对

、夹具、手套、员工手部以及直接接触食品的容器。监测这些部位的目的，是评价清洁消毒效果和交叉污染风险。旧文中采用棉球擦拭50 cm178 或100 cm178 表面，再放入10 ml 无菌生理盐水中制备样液。这类擦拭法仍可作为基本思路，但现代实验室应明确采样面积、擦拭工具、湿

斜面培养物，接种于新的营养琼脂斜面，26 ～27 8451 培养24 小时。临用前，用0.9 无菌氯化钠溶液洗下菌苔，制成菌悬液。检查方法取直径8 cm或10 cm的培养皿，加入融化的抗生素8545 号培养基15 ～20 ml ，使其在皿底均匀摊布，放置于水平操作台上凝固，作为底层。另取抗生素8545

培养l-15 培养基适用于猴肾细胞和hep-2 的培养、原代（如胚胎和成人组织）细胞分离、多种病毒的培养以及神经元的培养等  8226 完全培养基（cm）完全培养基是在基础培养基中添加了血清、抗生素等物质，也叫（血清）细胞培养基。其中大部分细胞培养常用的是牛血清，因为牛

品量和稀释体系应按化妆品规范方法执行8220 酒精灯8221 为常规设备现代洁净台或生物安全柜内通常不宜使用明火8220 皿底直径9.0 mm 8221 应为约9.0 cm培养皿8220 1.0 cm、10.1 cm吸管8221 应为1.0 ml 、10.0 ml 等容量规格8220 15 的naoht 8221 应为naoh 溶液调节ph ，具体浓度按配制规程执行十二、小结化妆品中菌

此，沉降法更适合反映开放操作过程中对暴露物品的沉降污染风险，而不适合作为空气微生物浓度的精确定量方法。旧资料中提到8220 每100 cm178 培养基暴露5 min ，相当于10 l 空气中所含细菌数8221 ，这是一种经验换算思路。实际沉降效率受气流、粒径、湿度、人员活动、平板位

，不得将润洗液倒回原试剂瓶，避免污染原液。吸液时应使用洗耳球、移液管助吸器或电动助吸器，严禁口吸。管尖插入液面下约1 ～2 cm较合适。插入过深会使外壁附着过多液体，造成污染和体积误差；插入过浅则容易吸入空气。吸液至刻线以上后，用手指或助吸器控制

础培养基制备用水应符合实验方法或标准要求。旧版资料中常要求实验用水在25 8451 时电导率不超过25 956 s/cm ，相当于电阻率不低于0.4 m 937 183 cm；同时应定期检查微生物污染水平。实际应用中，实验室应按现行标准、设备能力和内部质量控制要求确认水质。水中若含有过多离子

管理水平。传统卫生监测中，食品接触面的卫生评价一般参考菌落总数和大肠菌群两项指标。例如，菌落总数8804 30 cfu/cm 178 、大肠菌群＜3 mpn/100 cm178 曾作为部分行业规范中的参考要求。实际工作中，应以企业执行的国家标准、行业标准或相关卫生规范为准。一、采样时间食品接触

酸，适合酵母菌和霉菌生长，同时对部分细菌有一定抑制作用，因此常用于真菌增菌。原文中8220 供试液10 ml ，相当于供试品1 g 、ml 、10 cm178 8221 应规范理解为：供试液取样量应与规定的供试品量对应，如1 g 、1 ml 或一定面积样品，经适当处理后接种。实际取样量、培养基

或灭菌纱布拭子。普通小拭子适合小面积、缝隙和局部区域取样；较大的灭菌纱布拭子适合大面积设备表面取样。传统方法中，可用约15 cm215 5 cm的灭菌纱布缠绕在不锈钢丝或合适手柄上制成大拭子。原文中8220 钢丝直径3 cm8221 明显不合理，实际应为较细的不锈钢丝或取样杆

本培养基、无氮基本培养基、2 倍氮源基本培养基和限制培养基在不同阶段发挥不同作用。培养基或试剂主要作用使用意义完全培养基（cm）提供丰富碳源、氮源、生长因子等支持野生型和营养缺陷型共同生长基本培养基（mm ）只提供微生物生长所需的最低营养成分用于区

样品匀液中吸取10 ml ，加入90 ml 稀释液，可制成1:100 稀释液；继续按同样方式操作，可获得1:1000 、1:10000 等连续稀释度。原文要求振摇时幅度约30 cm，7 s 内振摇25 次，目的是让样品液充分混匀，减少细菌分布不均带来的误差。移液时应注意吸管尖端不要接触瓶口或非无菌表面。吸

，适合霉菌和酵母菌生长，并能在一定程度上抑制部分细菌干扰。培养后形成的菌落数可用于估算拖鞋表面真菌污染水平，结果通常以cfu/50 cm178 报告。需要注意的是，该方法反映的是可培养真菌数量，不等同于全部微生物数量，也不能直接鉴定具体真菌种类。二、采样部位与

检测对象要求公共茶杯、茶盏、饮水杯等杯具应随机抽取清洗消毒后待使用的样品采样部位内、外缘与口唇接触处采样面积通常总面积50 cm178 采样方式无菌棉拭子涂抹采样送检要求采样后尽快送检，通常4 h 内完成送检茶具采样的重点是口唇接触部位。杯身外壁或杯底即使

评价样品保护环境工作区洁净度检测使用尘埃粒子计数器，在安全柜工作区内测定悬浮粒子浓度。原资料中提到采样口置于工作台面上20 cm高度，测量点按20 cm网格分布，每列至少3 点，每行至少5 点，评价标准为工作区洁净度达到5 级，即传统意义上的100 级。这一思路符

、培养基表面干湿程度和操作者熟练度影响较大，因此更依赖标准化操作。旧版资料中常见一种分区划线法：用接种环在平板a 区按约0.5 cm间隔划4 条平行线，再按同样方法在b 区和c 区划线，最后在d 区划一条连续曲线。培养后根据各条线的生长情况计分：每条有明显菌

以16000 215 g 离心15 min ，弃上清后用10 ml 0.1 蛋白胨水悬浮沉淀，吸取3 ml 接种于100 ml jm 肉汤中。需表面涂拭检测的样品，可用无菌棉签涂布50 cm178 ～100 cm178 表面，将棉签头剪入100 ml jm 肉汤中培养。水样检测时，取4 l 水样经0.45 956 m 滤膜过滤。若水样经氯处理，过滤前每升水中加

高检出率非常关键。五、增菌液pcr 检测：快速筛查目标基因标准中设置了增菌液pcr 检测步骤。dna 模板制备时，在距离pncc 增菌液液面下约1 cm处吸取1 ml ，置1.5 ml ep 管中，9000 r/min 离心3 min ，弃上清。用1 ml pbs 悬浮沉淀并清洗，重复清洗2 ～3 次，最后加入1 ml 无菌超纯水，100 8451

作台面、设备外壳、传递窗、门把手、墙面、地面等平整、干燥、规则硬质表面的微生物监测，结果通常以cfu/ 碟报告，每碟接触面积约25 cm178 。在药品gmp 环境监测体系中，接触碟法不能被理解为8220 随手按一下平板8221 。它涉及培养基选择、取样位置设计、人员操作一致性、消

tcbs 可疑菌落计算mpn ，会导致结果偏高。三、分离培养：从增菌液中筛选可疑菌落对所有显示生长的增菌液，用接种环在距离液面以下约1 cm处沾取一环增菌液，划线接种于tcbs 平板或弧菌显色培养基平板。每支增菌管应对应一块分离平板，避免混淆来源。平板于36 8451 177 1 8451 培

品资料未注明规格板具体面积，建议发布时写为8220 无菌规格板用于限定采样面积，具体规格以产品实物或标签为准8221 。如规格板面积为100 cm178 ，应在产品标签和说明书中明确标示，便于客户进行结果换算。七、产品特点产品特点说明实际价值预装9 ml 复方中和剂开管即可用

消毒剂消毒后表面仍可能受残留抑菌物影响cy006 适合消毒后表面或疑似有防腐剂、消毒剂残留的采样场景。若客户需要固定采样面积和按cfu/100 cm178 报告，建议搭配无菌规格板使用，或选择含规格板的cy005 版本。十二、质量控制建议质控或确认项目目的建议关注点外观检查确认包装

未注明规格板的具体面积，发布时建议写为8220 无菌规格板用于限定采样面积，具体规格以产品实物或标签为准8221 。若规格板面积为常见100 cm178 ，应在产品标签或说明书中明确标示，便于客户进行结果换算。五、复方中和剂常见功能类别下表为中和型采样液中常见功能类别说

测项目选择相应培养基、培养条件和报告方式。检测项目后续培养或检测方向报告要点细菌总数平板计数琼脂、菌落总数测试片等可按cfu/100 cm178 、cfu/ 件或企业内控方式报告大肠菌群大肠菌群发酵体系、测试片或选择性培养基按标准方法报告检出、计数或mpn 结果金黄色葡萄球菌

卫、餐饮、饮料厂等环境表面采样可衔接检测项目细菌总数、大肠菌群、金黄色葡萄球菌、李斯特菌等采样面积建议被采物体表面积＜100 cm178 时取全部表面；＞100 cm178 时取100 cm178 常温送检10 8451 ～30 8451 条件下，建议不超过4 h 冷藏送检0 8451 ～4 8451 条件下，建议不超过24 h 灭菌

触中和剂8. 转运按要求保存并尽快送检9. 检测取样液接种相应培养基或检测体系固定面积物表采样可配合无菌采样模板使用，例如常见10 cm215 10 cm面积。人员手卫生、餐饮具或不规则表面采样时，应按相关标准、企业sop 或验证方案确定涂抹范围和涂抹方式。七、中和剂适用

采样液中8. 转运按要求保存并尽快送检9. 检测取样液接种相应培养基或检测体系固定面积物表采样可配合无菌采样模板使用，例如常见10 cm215 10 cm面积。人员手卫生、餐饮具或不规则表面采样时，应按相关标准、企业sop 或验证方案确定涂抹范围和涂抹方式。八、采样效果的

采样液中8. 转运按要求保存并尽快送检9. 检测取样液接种相应培养基或检测体系固定面积物表采样可配合无菌采样模板使用，例如常见10 cm215 10 cm面积。人员手卫生、餐饮具或不规则表面采样时，应按相关标准、企业sop 或方法验证方案确定涂抹范围和涂抹方式。七、采样效

按要求保存和尽快送检8. 后续检测取样液接种相应培养基或检测体系若用于固定面积表面采样，建议配合无菌采样模板使用，例如常见10 cm215 10 cm采样面积。人员手卫生、餐饮具或不规则表面采样时，应按相关标准、企业sop 或验证方案确定涂抹面积和涂抹方式。七、采样效

拌加热煮沸至完全溶解4. 分装分装于试管中5. 灭菌121 8451 高压灭菌15 min 6. 摆放灭菌后趁热摆成高低层短斜面7. 底层深度底层建议保持2 ～3 cm8. 冷却备用凝固后备用，避免斜面过长或底层过浅tsi 必须制成高低层短斜面，不能简单倒成平板。底层过浅会影响厌氧环境和h 8322 s 反

菌相关检测中的增菌培养参考标准gb 4789.12-2025 ；fda bam 相关方法基础培养基使用量80.0 g/l 分装建议每管15 ml 覆盖方式加入液体石蜡覆盖培养基0.3 ～0.4 cm灭菌条件121 8451 高压灭菌10 min 使用前处理使用前煮沸10 ～15 min 驱除游离氧，迅速冷却胰蛋白酶加入每管基础液无菌加入1.5 胰蛋白酶（1:250 ）

性肉汤中过夜培养获得。测试时使用1 956 l 接种环进行平板划线，同时接种两个平板。划线可分为a 、b 、c 、d 四个区域：a 区按约0.5 cm间隔划4 条平行线，b 区和c 区同样划线，d 区划一条连续曲线。培养后根据各区菌落生长情况计算生长指数g 。操作环节要点工作菌

部阳性，都会影响mpn 结果的准确性。三、分离培养：tcbs 和弧菌显色培养基的作用对所有显示生长的增菌液，用接种环在距离液面以下约1 cm处沾取一环增菌液，划线接种于tcbs 平板或弧菌显色培养基平板。一支试管对应划线一块平板，避免不同试管之间交叉污染。平板于36 8451

15 min 。灭菌后保持直立冷却，制成半固体深层培养基备用。接种时应使用直针挑取纯培养菌落，自培养基中央垂直穿刺至距管底约0.5 ～1 cm处，再沿原路线拔出。接种后置36 177 1 8451 培养24 ～48 h 。培养结束后先观察硫化氢和动力结果，再滴加kovacs 氏靛基质试剂观察吲哚反应。

：重点在口唇接触部位采样应随机抽取清洗消毒后准备使用的茶具。检测部位应选择与使用者口唇接触最密切的区域，即茶具内外缘约1 cm～1.5 cm高处一圈。用灭菌生理盐水湿润无菌棉拭子后，在茶具内外缘涂抹规定面积，通常为50 cm178 。采样后用灭菌剪刀剪去手接触部分

处拖鞋采样应选择与足部直接接触、最容易污染的位置。原方法规定，用无菌棉拭子蘸取无菌生理盐水，在每只拖鞋鞋面与脚趾接触处5 cm215 5 cm面积上，有顺序地均匀涂抹3 次。一双拖鞋作为一份样品，因此总涂抹面积为50 cm178 。采样对象采样部位采样面积样品单位公共

。六、敷料类供试品敷料类供试品通常按规定数量取样，以无菌操作拆开每个包装，并在不同部位剪取样品。原资料中常见取约100 mg 或1 cm215 3 cm供试品的做法，接种于足以浸没供试品的适量培养基中。敷料类样品的污染可能分布不均，因此应从不同部位取样，不能只剪取

基质抑制降低鲜乳、冰淇淋、奶酪等必要时调ph ，离心去上清后用bolton 肉汤重悬沉淀浓缩目标菌，减少脂肪层干扰表面涂拭样品擦拭至少100 cm178 表面，将棉签头置于bolton 肉汤适用于食品表面或环境接触面检测水样大体积过滤，滤膜浸没于bolton 肉汤；含氯水需先中和余氯浓缩水中低

体积空气通过滤膜，微生物被截留后培养cfu/m 179 适合较大体积空气采样滤膜阻力、干燥损伤等可能影响回收率传统资料中常提到8220 5 min 内100 cm178 表面沉降的微生物量约相当于10 m 179 空气中的微生物数量8221 ，这是早期经验换算方法，并不适合现代规范检测中的精确定量。实际工

品接触的位置。采样时，可用经灭菌生理盐水、缓冲液或中和剂溶液湿润的棉拭子，在规定面积内进行纵横交叉擦拭。常见做法是选取25 cm178 或100 cm178 面积，用无菌规格板限定区域，棉拭子在该区域内反复涂擦，并在擦拭过程中不断转动棉签，使棉签各面充分接触被检表面

，因此穿刺深度和琼脂柱高度也很重要。原文提到，三糖铁琼脂底部糖分解需要厌氧环境，琼脂底层与斜面最低点之间的距离应不少于4 cm。这一要求有助于保证底层有足够的厌氧反应区域，避免琼脂层过薄导致结果不典型。tsi 制备和接种时，应保证斜面、底层比例合适，

的表面取样方法之一。定性检测时，可根据检测目的涂抹全部需要检测的表面；定量检测时，应先使用灭菌取样框限定被测区域，例如25 cm178 、100 cm178 或标准方法规定面积。棉拭子可由干燥棉花缠绕在约4 cm长、直径1 ～1.5 mm 的木棒或不锈钢棒上制成，也可直接使用一次性

用的表面采样方法之一。定性检测时，可根据检测目的涂抹全部需要检测的表面；定量检测时，应先用灭菌取样框确定被测区域，例如25 cm178 、100 cm178 或标准方法规定面积。棉拭子可用干燥棉花缠绕在约4 cm长、直径1 ～1.5 mm 的木棒或不锈钢棒上制成，也可使用一次性无菌

较高。需要注意，可计数菌落范围并非所有标准都相同。不同检测标准可能规定30 8211 300 cfu 、15 8211 150 cfu 、25 8211 250 cfu 或其他范围。原文中8220 9 cm平板50 8211 500 个菌落为宜8221 的说法不宜作为通用规则。正式检测应以适用标准、药典、国标或企业经验证的sop 为准。六、试剂纸、干片和

间培养后，落到平板上的活微生物形成可见菌落，实验人员通过计数菌落数评价环境空气中的可沉降菌污染情况。早期资料中常提到8220 100 cm178 培养基暴露5 min ，相当于接收10 l 空气中的细菌数8221 。这种说法来自经验换算，可用于帮助理解沉降法与空气体积之间的大致关系，

挂壁。若需准确移取某一溶液，通常应用待移取溶液润洗移液管2 ～3 次，以避免残留水分稀释溶液。吸液时，管尖插入液面下约1 ～2 cm即可，过深会使外壁附着过多液体，过浅则液面下降后容易吸入空气。读数时，移液管应保持垂直，视线与弯液面最低点相平。对于深

培养基性能培养基制备用水应符合微生物检验要求。一般情况下，实验用水在25 8451 时电导率不应超过25 956 s/cm ，对应电阻率约为8805 0.04 m 937 183 cm。原文中8220 相当于电阻率8805 0.4 m 937 183 cm8221 的换算不准确，应予以修正。若具体标准、培养基说明书或实验室体系文件对水质有更高要求

性代谢产物过度积累可溶性淀粉2.0 g/l 辅助碳源和保护性成分可吸附部分抑制性物质，并改善受损细胞恢复环境庖肉牛肉粒另加，约1 ～2 cm高还原性营养基质提供变性肉蛋白和含硫基团，有助于降低氧化还原电位还原性铁粉或铁屑另加，每管0.1 ～0.2 g 还原剂辅助消耗氧并维

结果换算为cfu/cm 178 。模板法是指在胴体相关部位放置灭菌模板，在模板圈定区域内用灭菌解剖刀和镊子切取约2 mm 厚样品。采样面积可为10 cm178 、50 cm178 、100 cm178 等，具体应根据检测目的和标准方法确定。皮肤采样法常用于禽类，可在屠宰线上从每只家禽胴体剪取颈部或胸部

菌，增菌液和选择性平板的质量将直接影响结果。五、选择性分离：mcpc 与cc 平板对所有显示生长的增菌液，用接种环在距离液面以下约1 cm处沾取一环增菌液，划线接种于mcpc 平板或cc 平板。平板置39 8451 ～40 8451 过夜培养；若实验室条件达不到39 8451 ～40 8451 ，可按sop 在35 8451 ～37 8451

等分离机制的层析介质，广泛应用于蛋白、多肽等化合物的分离纯化。订购信息：货号规格（直径/ 长度mm/mm ）装填体积（ml ）装填高度（cm）耐压（bar ）mxk16-20 16/200 5-31 2.5-15.5 7 mxk16-40 16/400 45-70 22.5-35 7 mxk16-70 16/700 105-130 52.5-65 7 mxk16-100 16/1000 165-190 82.5-95 7 mxk26-20 26/200 5-66 1-12.5 7 mxk26-40 26/400 122-186 23-35 7 mxk26-70 26/700 281-344 53-65 7 mxk26-100 26/1000 440-504 83-95 7 mxk50-20 50/200 0-274 0-14 7 mxk50-30 50/300 265-559 14-28 7 mxk50-60 50/600 794-1088

碎屑进入。  产品参数品牌biocomma 材质聚丙烯pp （过滤膜ptfe ）尺寸160 160mm 过滤膜直径16mm 无菌非无菌是否可高温高压灭菌是产品特点1. 尺寸16 215 16 cm，透气孔直径：16mm 2. 高质量ptfe 微孔滤膜（压边粘黏），透气不透菌3. 可高温高压灭菌使用方法取一张封口膜，将白色滤膜置于瓶口，用

等分离机制的层析介质，广泛应用于蛋白、多肽等化合物的分离纯化。订购信息：货号规格（直径/ 长度mm/mm ）装填体积（ml ）装填高度（cm）耐压（bar ）mxk16-20 16/200 5-31 2.5-15.5 7 mxk16-40 16/400 45-70 22.5-35 7 mxk16-70 16/700 105-130 52.5-65 7 mxk16-100 16/1000 165-190 82.5-95 7 mxk26-20 26/200 5-66 1-12.5 7 mxk26-40 26/400 122-186 23-35 7 mxk26-70 26/700 281-344 53-65 7 mxk26-100 26/1000 440-504 83-95 7 mxk50-20 50/200 0-274 0-14 7 mxk50-30 50/300 265-559 14-28 7 mxk50-60 50/600 794-1088

述操作显色，作为参比溶液。3 每次测试样品，同时取净化后的溶液于25 ml 容量瓶，不加显色剂，直接用萃取液定容。4 将上述溶液用1 cm比色皿在540 nm 处测量吸光度。四、实验结果1 、校正曲线绘制配制1 956 g/ml 的六价铬标准溶液，使用7 个不同浓度的溶液绘制校正曲线。

剧烈振荡1 min ，静置30 min ，4000 r/min 离心5min ，上清液待净化。二、spe 柱净化实验材料：copure® gcb/nh 2 ，500 mg/500 mg/6 ml 1 活化：gcb/nh 2 固相萃取柱中加入约2 cm高无水硫酸钠，使用前使用10 ml 乙腈- 甲苯3:1 v/v 活化。2 上样和洗脱：当溶液液面到达柱吸附层表面时，立即倒入上述待净化溶液4 ml

45 8451 水浴旋蒸浓缩至近干，转移至15 ml 离心管中，用乙腈定容至5 ml 待净化。二、样品净化（copure® 茶叶专用柱12 ml ）活化：茶叶柱加入约2 cm高无水硫酸钠，用5 ml 乙腈- 甲苯溶液（3:1 ）预洗柱；弃去流出液上样和洗脱：茶叶柱下接鸡心瓶，取待净化液1 ml 过柱，收集流出液

心管中，加入10 ml 乙腈，剧烈振荡1 min ，静置30 min ，4000 r/min 离心5 min 。上清液待净化。2.spe 柱净化1 活化：在biocomma® copure® gcb/nh2 cat.no.conhgc655 固相萃取柱中加入约2 cm高无水硫酸钠，使用前使用10 ml 乙腈- 甲苯3:1 ，v/v 活化。2 上样和洗脱：当溶液液面到达柱吸附层表面时，立即倒入上述待净化溶液4